🍄 Drożdże i pleśnie w żywności
Krótko: o co chodzi
Oznaczanie liczby żywych drożdży i pleśni w produktach przeznaczonych do spożycia przez ludzi i do żywienia zwierząt metodą posiewu powierzchniowego na podłożach z dichloranem w temperaturze 25 °C. Badanie wykonuje się według normy PN-ISO 21527-1:2009, PN-ISO 21527-2:2009; Podłoże — aktywność wody > 0,95: DRBC — agar z dichloranem, różem bengalskim i chloramfenikolem (część 1, p. 5.2.1). Procedura obejmuje 8 kroków; stosuje się je m.in. do: Produkty o aktywności wody wyższej niż 0,95: jaja, mięso, produkty mleczne (z wyjątkiem mleka w proszku), owoce, warzywa, świeże ciasta (część 1, rozdz. 1), Produkty o aktywności wody niższej lub równej 0,95: suszone owoce, ciasta, dżemy, suszone mięso, solone ryby, zboża i przetwory zbożowe, mąki, orzechy, przyprawy — bez produktów odwodnionych o aktywności wody niższej lub równej 0,60 (część 2, rozdz. 1), Nie dla: liczenia zarodników pleśni, identyfikacji grzybów i badania mykotoksyn, grzybów ciepłoopornych w konserwach owocowych i warzywnych oraz grzybów halofilnych kserofilnych (rozdz. 1 obu części).
W skrócie
- Norma: PN-ISO 21527-1:2009, PN-ISO 21527-2:2009
- Kategoria: Mikrobiologia
- Kroków procedury: 8
- Podłoże — aktywność wody > 0,95: DRBC — agar z dichloranem, różem bengalskim i chloramfenikolem (część 1, p. 5.2.1)
- Podłoże — aktywność wody ≤ 0,95: DG18 — agar z dichloranem i 18 % glicerolu (część 2, p. 5.2.1)
- Inkubacja: tlenowo w (25 ± 1) °C: 5 d (część 1), 5–7 d (część 2); w razie potrzeby 1–2 d w rozproszonym świetle dziennym (p. 4.2)
Przegląd
STATUS (stan na 02.11.2026). PN-ISO 21527-1:2009 (wersja polska, opublikowana 08.06.2009, wprowadza ISO 21527-1:2008 [IDT], zastąpiła PN-ISO 7954:1999) i PN-ISO 21527-2:2009 (wersja polska, opublikowana 08.06.2009, wprowadza ISO 21527-2:2008 [IDT], zastąpiła PN-ISO 7698:2004) mają na kartach PKN datę wycofania 25.09.2020 i nie mają pola „Zastąpiona przez”. ISO 21527-1:2008 i ISO 21527-2:2008 (wydanie pierwsze, 01.07.2008; zastąpiły ISO 7698:1990, ISO 7954:1987 i ISO 13681:1995) są aktualne. Opis podaje treść dokumentów ISO.
ZAKRES CZĘŚCI 1 (rozdz. 1). Liczenie żywych drożdży i pleśni w produktach o aktywności wody wyższej niż 0,95 — jaja, mięso, produkty mleczne (z wyjątkiem mleka w proszku), owoce, warzywa, świeże ciasta itp. — metodą liczenia kolonii w (25 ± 1) °C. Metoda nie pozwala liczyć zarodników pleśni, nie obejmuje identyfikacji flory grzybowej ani badania mykotoksyn i nie nadaje się do liczenia grzybów ciepłoopornych, takich jak Byssochlamys fulva i Byssochlamys nivea, w owocach i warzywach w puszkach lub słojach. Według rozdziału 18 podręcznika BAM (FDA) drożdże i pleśnie powodują psucie się żywności, a niektóre pleśnie wytwarzają toksyczne metabolity — mykotoksyny.
ZAKRES CZĘŚCI 2 (rozdz. 1). Liczenie żywych drożdży osmofilnych i pleśni kserofilnych w produktach o aktywności wody niższej lub równej 0,95 — suszone owoce, ciasta, dżemy, suszone mięso, solone ryby, ziarna, zboża i przetwory zbożowe, mąki, orzechy, przyprawy itp. — metodą liczenia kolonii w (25 ± 1) °C. Część 2 nie dotyczy produktów odwodnionych o aktywności wody niższej lub równej 0,60 (odwodnione zboża, produkty oleiste, przyprawy, rośliny strączkowe, nasiona, proszki do napojów instant, suche produkty dla zwierząt domowych) i nie nadaje się do liczenia grzybów halofilnych kserofilnych, np. w suszonych rybach.
PODŁOŻA (część 1 i część 2, p. 5.2). DRBC na 1 000 ml: enzymatyczny hydrolizat tkanek zwierzęcych i roślinnych 5,0 g, D-glukoza 10,0 g, KH₂PO₄ 1,0 g, MgSO₄·H₂O 0,5 g, dichloran (2,6-dichloro-4-nitroanilina) 0,002 g, róż bengalski 0,025 g, agar 12–15 g, chloramfenikol 0,1 g (10 ml 1-procentowego roztworu w etanolu); pH 5,6 ± 0,2. DG18 — hydrolizat kazeiny 5,0 g, bez różu bengalskiego, z 220 g bezwodnego glicerolu, pozostałe składniki jak w DRBC. Sterylizacja 15 min w 121 °C, schłodzenie do 44–47 °C, po 15 ml na płytkę; podłoży nie wystawia się na światło, bo cytotoksyczne produkty rozkładu zaniżają wynik. Przy możliwym przeroście bakterii (np. surowe mięso) zaleca się chloramfenikol 50 mg/l i chlorotetracyklinę 50 mg/l; gentamycyny się nie zaleca, bo hamuje niektóre drożdże. Według karty podłoża DRBC wytwarzanego zgodnie z normą dichloran zmniejsza średnicę kolonii grzybów rozrastających się, a róż bengalski hamuje bakterie i ogranicza wielkość kolonii szybciej rosnących pleśni; według rozdziału 18 podręcznika BAM (FDA) aktywność wody podłoża DG18 wynosi 0,955.
ROZCIEŃCZALNIK I PRÓBKA (p. 5.1, rozdz. 7, p. 9.1 części 2). Zalecana jest woda peptonowa 0,1 % (1,0 g enzymatycznego hydrolizatu tkanek zwierzęcych lub roślinnych w 1 000 ml, pH 7,0 ± 0,2), a dla produktów o niskiej aktywności wody — rozcieńczalnik z 20–35 % glicerolu albo D-glukozy, który ogranicza szok osmotyczny. Można dodać środek powierzchniowo czynny (np. polisorbat 80, 0,05 %), by ograniczyć zlepianie zarodników. Część 2 zaleca homogenizator perystaltyczny zamiast blendera lub wytrząsarki, pipetę z zawiesiną trzyma się poziomo (zarodniki szybko sedymentują), a zawiesiny wstrząsa przed pobraniem; próbki laboratoryjnej nie zamraża się.
PRZEPISY. Rozporządzenie Komisji (WE) nr 2073/2005 (tekst skonsolidowany, stan 01.07.2026) nie zawiera kryteriów dla drożdży i pleśni.
CZEGO TU NIE PODAJEMY. Dostępne teksty kończą się na rozdz. 6 (część 1) i p. 9.1 (część 2). Objętości posiewu, położenia płytek w czasie inkubacji, sposobu liczenia i wyboru płytek, obliczeń, potwierdzania kolonii wątpliwych i danych precyzji nie podajemy. Przy krokach posiewu, inkubacji i liczenia podajemy dla porównania ustalenia metody pokrewnej z rozdziału 18 podręcznika BAM (FDA) — nie są one treścią normy.
Zasada metody
Płytki z podłożem selektywnym posiewa się powierzchniowo określoną ilością próbki ciekłej, zawiesiny wyjściowej albo ich rozcieńczeń dziesiętnych, zależnie od spodziewanej liczby kolonii (p. 4.1). Płytki inkubuje się tlenowo w (25 ± 1) °C przez 5 d (część 1) albo 5–7 d (część 2); w razie potrzeby zostawia się je na 1–2 d w rozproszonym świetle dziennym (p. 4.2). Kolonie liczy się, w razie potrzeby sprawdzając wątpliwe pod lupą binokularną albo mikroskopem, a liczbę drożdży i pleśni w 1 g albo 1 ml oblicza z płytek z rozcieńczeń dających policzalne kolonie — drożdże i pleśnie osobno, gdy to potrzebne (p. 4.3–4.4).
Zastosowania
- Produkty o aktywności wody wyższej niż 0,95: jaja, mięso, produkty mleczne (z wyjątkiem mleka w proszku), owoce, warzywa, świeże ciasta (część 1, rozdz. 1)
- Produkty o aktywności wody niższej lub równej 0,95: suszone owoce, ciasta, dżemy, suszone mięso, solone ryby, zboża i przetwory zbożowe, mąki, orzechy, przyprawy — bez produktów odwodnionych o aktywności wody niższej lub równej 0,60 (część 2, rozdz. 1)
- Nie dla: liczenia zarodników pleśni, identyfikacji grzybów i badania mykotoksyn, grzybów ciepłoopornych w konserwach owocowych i warzywnych oraz grzybów halofilnych kserofilnych (rozdz. 1 obu części)
Kluczowe parametry
| Parametr | Wartość |
|---|---|
| Podłoże — aktywność wody > 0,95 | DRBC — agar z dichloranem, różem bengalskim i chloramfenikolem (część 1, p. 5.2.1) |
| Podłoże — aktywność wody ≤ 0,95 | DG18 — agar z dichloranem i 18 % glicerolu (część 2, p. 5.2.1) |
| Inkubacja | tlenowo w (25 ± 1) °C: 5 d (część 1), 5–7 d (część 2); w razie potrzeby 1–2 d w rozproszonym świetle dziennym (p. 4.2) |
| Drożdże | mezofilne tlenowe drobnoustroje tworzące w 25 °C na powierzchni podłoża matowe lub lśniące, okrągłe kolonie, zwykle o regularnym brzegu i mniej lub bardziej wypukłe (część 1, p. 3.1) |
| Pleśnie | mezofilne tlenowe drobnoustroje strzępkowe tworzące zwykle płaskie lub puszyste, rozrastające się kolonie, często z barwnymi strukturami owocnikowymi lub zarodnikującymi (część 1, p. 3.2) |
| Rozcieńczalnik | woda peptonowa 0,1 %; w części 2 zalecany rozcieńczalnik z 20–35 % glicerolu albo D-glukozy (p. 5.1) |
Norma
- Numer normy
- PN-ISO 21527-1:2009, PN-ISO 21527-2:2009
- Tytuł (PL)
- Mikrobiologia żywności i pasz — Horyzontalna metoda oznaczania liczby drożdży i pleśni — Część 1: Metoda liczenia kolonii w produktach o aktywności wody wyższej niż 0,95 / Część 2: Metoda liczenia kolonii w produktach o aktywności wody niższej lub równej 0,95
- Title (EN)
- Microbiology of food and animal feeding stuffs — Horizontal method for the enumeration of yeasts and moulds — Part 1: Colony count technique in products with water activity greater than 0.95 / Part 2: Colony count technique in products with water activity ≤ 0.95
Procedura krok po kroku
-
Wybór części normy
Część 1 (agar DRBC) — produkty o aktywności wody wyższej niż 0,95; część 2 (agar DG18) — produkty o aktywności wody niższej lub równej 0,95, z wyjątkiem produktów odwodnionych o aktywności wody niższej lub równej 0,60 (rozdz. 1).
-
Próbka
Próbka laboratoryjna nie może być zamrożona (część 2, rozdz. 7); próbkę do badań, zawiesinę wyjściową i rozcieńczenia przygotowuje się według ISO 6887, ISO 7218, ISO 8261 i normy dla danego produktu (rozdz. 8, p. 9.1).
-
Rozcieńczenia
Rozcieńczalnikiem jest zwykle woda peptonowa 0,1 %; homogenizator perystaltyczny ma pierwszeństwo przed blenderem lub wytrząsarką; pipetę z zawiesiną trzyma się poziomo, a zawiesinę i rozcieńczenia wstrząsa przed pobraniem, bo zarodniki szybko sedymentują (część 2, p. 9.1).
-
Przygotowanie podłoża
Składniki oprócz chloramfenikolu zagotować do rozpuszczenia, dodać 10 ml 1-procentowego roztworu chloramfenikolu w etanolu, sterylizować 15 min w 121 °C, schłodzić w łaźni do 44–47 °C i poniżej 50 °C rozlać po 15 ml na płytki; podłoże chronić przed światłem (p. 5.2.1.2).
-
Posiew
Płytki posiewa się powierzchniowo określoną ilością próbki ciekłej, zawiesiny wyjściowej albo rozcieńczeń, zależnie od spodziewanej liczby kolonii (p. 4.1); objętość posiewu i liczbę płytek podaje rozdz. 9 normy, poza dostępnym tekstem. W metodzie BAM (rozdz. 18) posiewa się po 0,1 ml każdego rozcieńczenia na płytki DRBC.
-
Inkubacja
Tlenowo w (25 ± 1) °C przez 5 d (część 1) albo 5–7 d (część 2); w razie potrzeby płytki zostawia się na 1–2 d w rozproszonym świetle dziennym (p. 4.2). W metodzie BAM płytek się nie odwraca, a gdy po 5 dniach nie ma wzrostu, inkubuje się je jeszcze 48 h.
-
Liczenie
Policzyć kolonie (propagule); kolonie wątpliwe — dla odróżnienia drożdży od bakterii — sprawdzić pod lupą binokularną albo mikroskopem. Drożdże i pleśnie liczy się osobno, gdy to potrzebne (p. 4.3–4.4). W metodzie BAM liczy się płytki z 10–150 koloniami.
-
Wynik
Liczbę drożdży i pleśni w 1 g albo 1 ml oblicza się z płytek z rozcieńczeń dających policzalne kolonie (p. 4.4).
Wymagany sprzęt i aparatura
| Sprzęt | Przykład | Orientacyjna cena |
|---|---|---|
| Cieplarka | (25 ± 1) °C (p. 6.1) | — |
| Pipety całkowitego wypływu | jałowe, 1 ml z podziałką co 0,1 ml (p. 6.2) | — |
| Łaźnia wodna albo podobne urządzenie | 44–47 °C (p. 6.3) | — |
| pH-metr | dokładność 0,1 pH w 25 °C (p. 6.4) | — |
| Butelki, kolby i probówki | do gotowania i przechowywania podłoży i do rozcieńczeń (p. 6.5) | — |
| Płytki Petriego | jałowe, szklane lub plastikowe, o średnicy 90–100 mm (p. 6.6) | — |
| Mikroskop | jasne pole, powiększenie 250–1 000 razy — do odróżnienia komórek drożdży od bakterii (p. 6.7) | — |
| Głaszczki | szklane lub plastikowe, o średnicy poniżej 2 mm i długości 80 mm, aby na głaszczce zostawało jak najmniej próbki (p. 6.8) | — |
| Lupa binokularna | powiększenie 6,5–50 razy — do rozróżniania kolonii i komórek drożdży i pleśni (p. 6.9) | — |
Odczynniki, podłoża i materiały eksploatacyjne
| Odczynnik | CAS | Szczegóły |
|---|---|---|
| Agar DRBC | — | skład według części 1, p. 5.2.1 (wyżej, w opisie); pH 5,6 ± 0,2; przechowywać w ciemności; karta podłoża wytwarzanego zgodnie z normą podaje do jego badania m.in. Saccharomyces cerevisiae ATCC 9763 (WDCM 00058) i Aspergillus brasiliensis ATCC 16404 (WDCM 00053) |
| Agar DG18 | — | skład według części 2, p. 5.2.1 (wyżej, w opisie); 220 g bezwodnego glicerolu na 1 000 ml; pH 5,6 ± 0,2 |
| Dichloran (2,6-dichloro-4-nitroanilina) | 99-30-9 | 0,002 g na 1 000 ml podłoża (p. 5.2.1) |
| Róż bengalski | 632-69-9 | 0,025 g na 1 000 ml agaru DRBC (część 1, p. 5.2.1) |
| Chloramfenikol | 56-75-7 | 0,1 g na 1 000 ml — 10 ml 1-procentowego roztworu w etanolu dodane przed sterylizacją; przy możliwym przeroście bakterii 50 mg/l z chlorotetracykliną 50 mg/l (p. 5.2.1) |
| Glicerol bezwodny | 56-81-5 | 220 g na 1 000 ml agaru DG18 (część 2, p. 5.2.1) |
| Woda peptonowa 0,1 % | — | 1,0 g enzymatycznego hydrolizatu tkanek zwierzęcych lub roślinnych w 1 000 ml wody, pH 7,0 ± 0,2 (p. 5.1.2–5.1.3) |
Bezpieczeństwo i higiena pracy (BHP)
- Liczenie pleśni prowadzi się z największą starannością, aby chronić wykonującego i nie zanieczyścić powietrza zarodnikami pleśni (ostrzeżenie w części 1)
- Gotowe podłoża przechowuje się w ciemności — wystawienie na światło daje cytotoksyczne produkty rozkładu i zaniża wynik (przestroga w p. 5.2.1.2.1)
Najczęstsze pytania
Jaka norma opisuje to badanie?
Badanie wykonuje się według normy PN-ISO 21527-1:2009, PN-ISO 21527-2:2009 — „Mikrobiologia żywności i pasz — Horyzontalna metoda oznaczania liczby drożdży i pleśni — Część 1: Metoda liczenia kolonii w produktach o aktywności wody wyższej niż 0,95 / Część 2: Metoda liczenia kolonii w produktach o aktywności wody niższej lub równej 0,95”. Tytuł angielski: „Microbiology of food and animal feeding stuffs — Horizontal method for the enumeration of yeasts and moulds — Part 1: Colony count technique in products with water activity greater than 0.95 / Part 2: Colony count technique in products with water activity ≤ 0.95”.
Na czym polega ta metoda?
Płytki z podłożem selektywnym posiewa się powierzchniowo określoną ilością próbki ciekłej, zawiesiny wyjściowej albo ich rozcieńczeń dziesiętnych, zależnie od spodziewanej liczby kolonii (p. 4.
Jaki jest zakres pomiarowy i dokładność?
Podłoże — aktywność wody > 0,95: DRBC — agar z dichloranem, różem bengalskim i chloramfenikolem (część 1, p. 5.2.1); Podłoże — aktywność wody ≤ 0,95: DG18 — agar z dichloranem i 18 % glicerolu (część 2, p. 5.2.1); Inkubacja: tlenowo w (25 ± 1) °C: 5 d (część 1), 5–7 d (część 2); w razie potrzeby 1–2 d w rozproszonym świetle dziennym (p. 4.2); Drożdże: mezofilne tlenowe drobnoustroje tworzące w 25 °C na powierzchni podłoża matowe lub lśniące, okrągłe kolonie, zwykle o regularnym brzegu i mniej lub bardziej wypukłe (część 1, p. 3.1).
Ile trwa wykonanie badania?
Procedura obejmuje 8 kroków. Norma nie podaje czasu trwania dla wszystkich etapów — decyduje procedura laboratorium.
Jaki sprzęt jest potrzebny?
Cieplarka, Pipety całkowitego wypływu, Łaźnia wodna albo podobne urządzenie, pH-metr, Butelki, kolby i probówki, Płytki Petriego, Mikroskop, Głaszczki, Lupa binokularna.
Gdzie stosuje się to badanie?
Produkty o aktywności wody wyższej niż 0,95: jaja, mięso, produkty mleczne (z wyjątkiem mleka w proszku), owoce, warzywa, świeże ciasta (część 1, rozdz. 1); Produkty o aktywności wody niższej lub równej 0,95: suszone owoce, ciasta, dżemy, suszone mięso, solone ryby, zboża i przetwory zbożowe, mąki, orzechy, przyprawy — bez produktów odwodnionych o aktywności wody niższej lub równej 0,60 (część 2, rozdz. 1); Nie dla: liczenia zarodników pleśni, identyfikacji grzybów i badania mykotoksyn, grzybów ciepłoopornych w konserwach owocowych i warzywnych oraz grzybów halofilnych kserofilnych (rozdz. 1 obu części).
Jakie środki ostrożności obowiązują?
Liczenie pleśni prowadzi się z największą starannością, aby chronić wykonującego i nie zanieczyścić powietrza zarodnikami pleśni (ostrzeżenie w części 1); Gotowe podłoża przechowuje się w ciemności — wystawienie na światło daje cytotoksyczne produkty rozkładu i zaniża wynik (przestroga w p. 5.2.1.2.1).
Które laboratorium wykona to badanie?
Badanie wykonują laboratoria akredytowane według ISO/IEC 17025. Na LabCoda wyszukasz je po numerze normy PN-ISO 21527.