🦠 Clostridium perfringens w żywności
Krótko: o co chodzi
Oznaczanie liczby Clostridium perfringens metodą posiewu zalewowego z nakładką na agarze z tryptozą, siarczynem i cykloseryną (TSC) w warunkach beztlenowych w 37 °C przez 20 h, z potwierdzeniem testem fosfatazy kwaśnej albo na podłożu SIM. Badanie wykonuje się według normy PN-EN ISO 7937:2005; Podłoże: agar TSC — z tryptozą, siarczynem i cykloseryną (p. 9.4.5). Procedura obejmuje 9 kroków; stosuje się je m.in. do: Produkty przeznaczone do spożycia przez ludzi i do żywienia zwierząt (ISO 15213-2, rozdz. 1), Próbki środowiskowe z produkcji i obrotu żywnością i paszami oraz próbki z produkcji pierwotnej (rozdz. 1), Kategorie zwalidowane: produkty mięsne gotowe do spożycia i do odgrzania, jaja i produkty jajeczne, przetworzone owoce i warzywa, preparaty i kaszki dla niemowląt, potrawy wieloskładnikowe, karma dla zwierząt domowych i pasze, próbki środowiskowe (rozdz. 1, uwaga).
W skrócie
- Norma: PN-EN ISO 7937:2005
- Kategoria: Mikrobiologia
- Kroków procedury: 9
- Podłoże: agar TSC — z tryptozą, siarczynem i cykloseryną (p. 9.4.5)
- Posiew: zalewowy: 1 ml próbki płynnej albo zawiesiny wyjściowej na dwie płytki 90 mm (na jedną, gdy posiewa się kilka rozcieńczeń); przy małych liczbach 10 ml zawiesiny na trzy płytki 140 mm (p. 9.4.1)
- Podłoże i nakładka: 12–15 ml TSC (płytki 90 mm) albo 30–35 ml (140 mm) w 44–47 °C; nakładka około 5 ml albo 12 ml (p. 9.4.5–9.4.7)
Przegląd
STATUS (stan na 02.11.2026). PN-EN ISO 7937:2005 — wersja polska, opublikowana 18.11.2005, wprowadzała EN ISO 7937:2004 i ISO 7937:2004 [IDT]; WYCOFANA 09.05.2024 i zastąpiona przez PN-EN ISO 15213-2:2024-05 (wersja angielska, opublikowana 09.05.2024, wprowadza EN ISO 15213-2:2023 i ISO 15213-2:2023 [IDT]). ISO 7937:2004 wycofano 16.11.2023; ISO 15213-2:2023 (wydanie pierwsze, 16.11.2023) ma tytuł „Mikrobiologia łańcucha żywnościowego — Horyzontalna metoda wykrywania i oznaczania liczby Clostridium spp. — Część 2: Oznaczanie liczby Clostridium perfringens metodą liczenia kolonii”. Zmiany uznano za duże (ISO 17468) — wpływają na charakterystyki metody: zakres rozszerzono o próbki z produkcji pierwotnej; obróbka cieplna 10 min w 80 °C jest opcjonalna (przy dużej florze towarzyszącej albo do liczenia samych przetrwalników); podłoże SC przemianowano na TSC bez zmiany składu; potwierdzanie zmieniono według ISO 14189; dodano kryteria badania przydatności podłoży, charakterystyki metody i metody molekularne odróżniające szczepy chorobotwórcze. Opis podaje treść ISO 15213-2:2023.
ZAKRES (ISO 15213-2, rozdz. 1). Liczenie C. perfringens metodą płytkową w produktach przeznaczonych do spożycia przez ludzi i do żywienia zwierząt, w próbkach środowiskowych z produkcji i obrotu żywnością i paszami oraz w próbkach z produkcji pierwotnej. Metodę zwalidowano międzylaboratoryjnie dla produktów mięsnych gotowych do spożycia i do odgrzania, jaj i produktów jajecznych, przetworzonych owoców i warzyw, preparatów i kaszek dla niemowląt, potraw wieloskładnikowych, karmy dla zwierząt domowych i pasz oraz próbek środowiskowych; dla produkcji pierwotnej charakterystyk nie wyznaczono. Technika nadaje się do próbek dających co najmniej 10 kolonii na płytce — powyżej 10 jtk/ml w próbkach płynnych albo 100 jtk/g w stałych; przy dwóch płytkach (suma co najmniej 10 kolonii) — powyżej 5 jtk/ml albo 50 jtk/g.
ZNACZENIE (wprowadzenie). C. perfringens to Gram-dodatnia, beztlenowa bakteria przetrwalnikująca, występująca głównie w glebie, ale także w przewodzie pokarmowym ludzi i zwierząt — duża liczba w żywności może świadczyć o niewłaściwym przygotowaniu lub obchodzeniu się z nią. Duża liczba w żywności gotowej do spożycia może wywołać chorobę, głównie biegunkę; zatrucia powodują szczepy wytwarzające enterotoksynę CPE, uwalnianą podczas sporulacji w jelicie cienkim. Przetrwalniki są ciepłooporne i mogą kiełkować i namnażać się w żywności gotowej do spożycia po obróbce cieplnej.
KOLONIE I DEFINICJE (p. 3, 4.3, 9.5). Przypuszczalne C. perfringens to bakterie przetrwalnikujące tworzące policzalne typowe kolonie w podłożu selektywnym w warunkach ściśle beztlenowych; potwierdzone — ponadto mające fosfatazę kwaśną; chorobotwórcze dla człowieka — potwierdzone szczepy z genem cpe enterotoksyny (chromosomowym albo plazmidowym). Typowe kolonie na agarze TSC są czarne albo szare do żółtobrązowych (także przy słabej barwie) — barwę daje siarczek żelaza(II), który powstaje z jonów siarczkowych i żelaza(III) z podłoża. Płytki liczy się w ciągu 30 min od wyjęcia z atmosfery beztlenowej, bo barwa szybko blednie w tlenie; dłuższa inkubacja może dać nadmierne zaczernienie, a beztlenowce wytwarzające wodór mogą zaczernić całe podłoże.
PODŁOŻE TSC (skład według ISO 7937:2004, p. 5.2; ISO 15213-2 zmieniło tylko nazwę podłoża SC na TSC, bez zmiany składu). Podłoże podstawowe na 1 000 ml: enzymatyczny hydrolizat białka 15,0 g, enzymatyczny hydrolizat soi 5,0 g, ekstrakt drożdżowy 5,0 g, disiarczan(IV) disodu (Na₂S₂O₅, bezwodny) 1,0 g, cytrynian amonowo-żelazowy(III) (co najmniej 15 % żelaza) 1,0 g, agar 9–18 g; pH 7,6 ± 0,2 w 25 °C. Do każdych 100 ml podłoża podstawowego schłodzonego do 44–47 °C dodaje się tuż przed użyciem 1 ml roztworu D-cykloseryny (4,0 g w 100 ml wody, sterylizowanego przez filtrację). Dawne podłoże SC nazywano „TSC bez żółtka jaja”.
PRZEPISY. Rozporządzenie Komisji (WE) nr 2073/2005 (tekst skonsolidowany, stan 01.07.2026) nie zawiera kryteriów dla Clostridium perfringens. W wodzie do spożycia Clostridium perfringens (łącznie ze sporami) bada się metodą referencyjną PN-EN ISO 14189 (Dz.U. 2026 poz. 748) — osobny wpis Bazy wiedzy.
CZEGO TU NIE PODAJEMY. Dostępny tekst ISO 15213-2:2023 kończy się na p. 9.6.1.2 (przesiew kolonii na agar z krwią). Przebiegu testu fosfatazy kwaśnej i testu na podłożu SIM, obliczeń, składu podłoży z zał. B (poza TSC — według ISO 7937:2004), metod molekularnych z zał. D i charakterystyk metody nie podajemy.
Zasada metody
Określoną ilość próbki płynnej albo zawiesiny wyjściowej i kolejnych rozcieńczeń dziesiętnych przenosi się na puste płytki Petriego i miesza ze stopionym podłożem selektywnym (TSC), a po zestaleniu wylewa nakładkę z tego samego podłoża, która zapobiega rozrastaniu się kolonii na powierzchni (p. 4.1, 4.3). Płytki inkubuje się beztlenowo w 37 °C przez 20 h i liczy kolonie typowe — czarne albo szare do żółtobrązowych; wybrane kolonie potwierdza się, a wynik oblicza jako liczbę potwierdzonych C. perfringens (p. 4.3–4.4). Do liczenia samych przetrwalników rozcieńczenia ogrzewa się przed posiewem 10 min w 80 °C (p. 4.1).
Zastosowania
- Produkty przeznaczone do spożycia przez ludzi i do żywienia zwierząt (ISO 15213-2, rozdz. 1)
- Próbki środowiskowe z produkcji i obrotu żywnością i paszami oraz próbki z produkcji pierwotnej (rozdz. 1)
- Kategorie zwalidowane: produkty mięsne gotowe do spożycia i do odgrzania, jaja i produkty jajeczne, przetworzone owoce i warzywa, preparaty i kaszki dla niemowląt, potrawy wieloskładnikowe, karma dla zwierząt domowych i pasze, próbki środowiskowe (rozdz. 1, uwaga)
- Liczenie samych przetrwalników — z obróbką 10 min w 80 °C (p. 9.3)
Kluczowe parametry
| Parametr | Wartość |
|---|---|
| Podłoże | agar TSC — z tryptozą, siarczynem i cykloseryną (p. 9.4.5) |
| Posiew | zalewowy: 1 ml próbki płynnej albo zawiesiny wyjściowej na dwie płytki 90 mm (na jedną, gdy posiewa się kilka rozcieńczeń); przy małych liczbach 10 ml zawiesiny na trzy płytki 140 mm (p. 9.4.1) |
| Podłoże i nakładka | 12–15 ml TSC (płytki 90 mm) albo 30–35 ml (140 mm) w 44–47 °C; nakładka około 5 ml albo 12 ml (p. 9.4.5–9.4.7) |
| Inkubacja | beztlenowo, 37 °C, (20 ± 2) h, płytki odwrócone (p. 9.4.8, 9.5.1) |
| Atmosfera beztlenowa | tlen poniżej 1 %, ditlenek węgla 9–13 % (p. 6.1) |
| Liczenie | płytki z mniej niż 150 koloniami przypuszczalnymi (90 mm) albo 365 (140 mm), w ciągu 30 min od wyjęcia z atmosfery beztlenowej; 5 losowych kolonii z płytki do potwierdzenia (p. 9.5) |
| Potwierdzenie | przesiew na agar Columbia z krwią, beztlenowo (20 ± 2) h w 37 °C; test fosfatazy kwaśnej albo na podłożu SIM (p. 9.6.1.2) |
| Przetrwalniki | obróbka (10 ± 1) min w 80 °C w ciągu 15 min od przygotowania zawiesiny (p. 9.3) |
Norma
- Numer normy
- PN-EN ISO 7937:2005
- Tytuł (PL)
- Mikrobiologia żywności i pasz — Horyzontalna metoda oznaczania liczby Clostridium perfringens — Metoda liczenia kolonii
- Title (EN)
- Microbiology of food and animal feeding stuffs — Horizontal method for the enumeration of Clostridium perfringens — Colony-count technique
Procedura krok po kroku
-
Próbka i rozcieńczenia
Zawiesinę wyjściową i jeden szereg rozcieńczeń dziesiętnych przygotowuje się według ISO 6887 i normy dla danego produktu (p. 9.2); przebieg całości — zał. A (p. 9.1).
-
Przetrwalniki (opcjonalnie)
Do liczenia samych przetrwalników ogrzać szereg rozcieńczeń w łaźni (10 ± 1) min w 80 °C, najpóźniej 15 min po przygotowaniu zawiesiny (albo przechować w topniejącym lodzie do 2 h); temperaturę mierzyć w butelce odniesienia, czas liczyć od osiągnięcia w niej 80 °C (dojście nie dłużej niż 5 min), potem od razu schłodzić do około 20 °C (p. 9.3).
-
Posiew
Do dwóch jałowych płytek 90 mm przenieść po 1 ml próbki płynnej albo zawiesiny wyjściowej (10⁻¹), do jednej — 1 ml kolejnego rozcieńczenia; w razie potrzeby dalsze rozcieńczenia, każde nową pipetą; przy małych liczbach — 10 ml zawiesiny na trzy płytki 140 mm (p. 9.4.1–9.4.3).
-
Zalanie i nakładka
Wlać 12–15 ml (90 mm) albo 30–35 ml (140 mm) agaru TSC o temperaturze 44–47 °C, wymieszać przez obracanie płytek i zestalić na chłodnej poziomej powierzchni; potem wlać nakładkę około 5 ml (90 mm) albo 12 ml (140 mm) tego samego podłoża (p. 9.4.5–9.4.7).
-
Inkubacja
Płytki odwrócić i inkubować beztlenowo w 37 °C (p. 9.4.8).
-
Liczenie
Po (20 ± 2) h policzyć kolonie typowe — czarne albo szare do żółtobrązowych — w ciągu 30 min od wyjęcia płytek z atmosfery beztlenowej; wziąć płytki z mniej niż 150 koloniami (90 mm) albo 365 (140 mm) i z każdej wybrać losowo 5 kolonii do potwierdzenia (p. 9.5).
-
Przesiew
Każdą wybraną kolonię posiać na agar Columbia z krwią (albo inne podłoże bogate) i inkubować beztlenowo (20 ± 2) h w 37 °C; przy kilku postaciach kolonii — po jednej z każdej; po inkubacji płytki można trzymać w 5 °C do 48 h (p. 9.6.1).
-
Potwierdzenie
Świeżo wyrosłe, dobrze izolowane kolonie potwierdza się testem fosfatazy kwaśnej albo testem na podłożu SIM; metody alternatywne — po walidacji według ISO 16140-4 albo ISO 16140-6 (p. 9.6.1.2).
-
Wynik
Liczba potwierdzonych C. perfringens w jtk na 1 g, 1 ml, 1 cm² albo na urządzenie do pobierania próbek (p. 3.4, 4.4).
Wymagany sprzęt i aparatura
| Sprzęt | Przykład | Orientacyjna cena |
|---|---|---|
| Urządzenie do atmosfery beztlenowej | hermetyczny słój albo komora beztlenowa; tlen poniżej 1 %, CO₂ 9–13 % przez cały czas inkubacji (p. 6.1) | — |
| Aparat do sterylizacji na sucho (suszarka) albo parą (autoklaw) | p. 6.2 | — |
| Zamrażarka | (−20 ± 2) °C i (−70 ± 3) °C (p. 6.3) | — |
| Cieplarka | (37 ± 1) °C (p. 6.4) | — |
| pH-metr | błąd graniczny kalibracji ± 0,1 pH w 25 °C (p. 6.5) | — |
| Chłodziarka | (5 ± 3) °C (p. 6.6) | — |
| Jałowe butelki, kolby albo probówki | o odpowiedniej pojemności, z nietoksycznymi zakrętkami (p. 6.7) | — |
| Pipety | jałowe, wielomiarowe albo automatyczne, 10 ml, 1 ml i 0,1 ml (p. 6.8) | — |
| Ezy | jałowe, o średnicy około 3 mm (10 µl) i 1 µl, albo igła lub drut (p. 6.9) | — |
| Płytki Petriego | jałowe, o średnicy około 90 mm i (opcjonalnie) około 140 mm (p. 6.10) | — |
| Łaźnia wodna z termostatem | 44–47 °C i (80 ± 2) °C (p. 6.11) | — |
Odczynniki, podłoża i materiały eksploatacyjne
| Odczynnik | CAS | Szczegóły |
|---|---|---|
| Agar TSC (z tryptozą, siarczynem i cykloseryną) | — | skład podłoża podstawowego według ISO 7937:2004, p. 5.2 (wyżej, w opisie); przed użyciem 1 ml roztworu D-cykloseryny na 100 ml |
| Disiarczan(IV) disodu (pirosiarczyn sodu) | 7681-57-4 | Na₂S₂O₅ bezwodny, 1,0 g na 1 000 ml podłoża podstawowego (ISO 7937:2004, p. 5.2.1) |
| Cytrynian amonowo-żelazowy(III) | 1185-57-5 | co najmniej 15 % (ułamek masowy) żelaza; 1,0 g na 1 000 ml (ISO 7937:2004, p. 5.2.1) |
| D-Cykloseryna | 68-41-7 | roztwór 4,0 g w 100 ml wody, sterylizowany przez filtrację; 1 ml na 100 ml podłoża, czyli 400 mg/l (ISO 7937:2004, p. 5.2.2–5.2.3) |
| Agar Columbia z krwią | — | do przesiewu kolonii przed potwierdzeniem; bez krwi — agar Columbia albo inne podłoże bogate, np. agar tryptonowo-sojowy albo z infuzją mózgowo-sercową (ISO 15213-2, p. 9.6.1.2) |
| Rozcieńczalnik | — | według ISO 6887 (p. 9.2) |
Bezpieczeństwo i higiena pracy (BHP)
- Badania liczby Clostridium perfringens prowadzi się tylko w odpowiednio wyposażonych laboratoriach, pod nadzorem doświadczonego mikrobiologa, z dużą starannością przy usuwaniu wszystkich inkubowanych materiałów (ostrzeżenie ISO 15213-2)
- Norma nie omawia wszystkich zagadnień bezpieczeństwa — ustalenie zasad BHP należy do użytkownika (ostrzeżenie ISO 15213-2)
Najczęstsze pytania
Jaka norma opisuje to badanie?
Badanie wykonuje się według normy PN-EN ISO 7937:2005 — „Mikrobiologia żywności i pasz — Horyzontalna metoda oznaczania liczby Clostridium perfringens — Metoda liczenia kolonii”. Tytuł angielski: „Microbiology of food and animal feeding stuffs — Horizontal method for the enumeration of Clostridium perfringens — Colony-count technique”.
Na czym polega ta metoda?
Określoną ilość próbki płynnej albo zawiesiny wyjściowej i kolejnych rozcieńczeń dziesiętnych przenosi się na puste płytki Petriego i miesza ze stopionym podłożem selektywnym (TSC), a po zestaleniu wylewa nakładkę z tego samego podłoża, która zapobiega rozrastaniu się kolonii na powierzchni (p. 4.
Jaki jest zakres pomiarowy i dokładność?
Podłoże: agar TSC — z tryptozą, siarczynem i cykloseryną (p. 9.4.5); Posiew: zalewowy: 1 ml próbki płynnej albo zawiesiny wyjściowej na dwie płytki 90 mm (na jedną, gdy posiewa się kilka rozcieńczeń); przy małych liczbach 10 ml zawiesiny na trzy płytki 140 mm (p. 9.4.1); Podłoże i nakładka: 12–15 ml TSC (płytki 90 mm) albo 30–35 ml (140 mm) w 44–47 °C; nakładka około 5 ml albo 12 ml (p. 9.4.5–9.4.7); Inkubacja: beztlenowo, 37 °C, (20 ± 2) h, płytki odwrócone (p. 9.4.8, 9.5.1).
Ile trwa wykonanie badania?
Procedura obejmuje 9 kroków. Norma nie podaje czasu trwania dla wszystkich etapów — decyduje procedura laboratorium.
Jaki sprzęt jest potrzebny?
Urządzenie do atmosfery beztlenowej, Aparat do sterylizacji na sucho (suszarka) albo parą (autoklaw), Zamrażarka, Cieplarka, pH-metr, Chłodziarka, Jałowe butelki, kolby albo probówki, Pipety, Ezy, Płytki Petriego, Łaźnia wodna z termostatem.
Gdzie stosuje się to badanie?
Produkty przeznaczone do spożycia przez ludzi i do żywienia zwierząt (ISO 15213-2, rozdz. 1); Próbki środowiskowe z produkcji i obrotu żywnością i paszami oraz próbki z produkcji pierwotnej (rozdz. 1); Kategorie zwalidowane: produkty mięsne gotowe do spożycia i do odgrzania, jaja i produkty jajeczne, przetworzone owoce i warzywa, preparaty i kaszki dla niemowląt, potrawy wieloskładnikowe, karma dla zwierząt domowych i pasze, próbki środowiskowe (rozdz. 1, uwaga); Liczenie samych przetrwalników — z obróbką 10 min w 80 °C (p. 9.3).
Jakie środki ostrożności obowiązują?
Badania liczby Clostridium perfringens prowadzi się tylko w odpowiednio wyposażonych laboratoriach, pod nadzorem doświadczonego mikrobiologa, z dużą starannością przy usuwaniu wszystkich inkubowanych materiałów (ostrzeżenie ISO 15213-2); Norma nie omawia wszystkich zagadnień bezpieczeństwa — ustalenie zasad BHP należy do użytkownika (ostrzeżenie ISO 15213-2).
Które laboratorium wykona to badanie?
Badanie wykonują laboratoria akredytowane według ISO/IEC 17025. Na LabCoda wyszukasz je po numerze normy PN-EN ISO 7937.